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佛手多糖对小鼠免疫功能影响 |
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( ±s)
空白对照组 10 35±6** 0.49±0.1**
CY模型组 10 23±3 0.35±0.1
龟鹿补肾组 1g 10 43±4** 0.59±0.06**
高剂量组 400 10 48±8** 0.64±0.08 **
中剂量组 200 10 39±6** 0.50±0.05 **
低剂量组 100 10 33±5** 0.49±0.09 **
与模型组比较，**P＜0.01
2.2 对CY所致免疫抑制小鼠溶血素形成的影响 ［3］：于给药的第1d每鼠腹腔注射5%的鸡红细胞生理盐水混悬液0.2ml免疫，第8d摘 眼球取血，分离血清，用生理盐水1∶1000稀释后取1ml，与5%鸡红细胞混悬液0.5ml和10% 补体0.5ml混匀，37℃温育30min，冰水中止反应，取上清液于紫外分光光度计540nm处比色，以不加补体的空白管作对照，结果见表2。
2.3 对CY所致免疫抑制小鼠溶血空斑形成的影响 ［4］：上述鸡红细胞免疫小鼠末次给药后2h取脾脏，将5只小鼠脾脏放在一起匀浆， 调脾细胞浓度为5×106个/ml，取脾细胞混悬液0.5ml加0.2%鸡红细胞混悬液和1∶10的豚 鼠血清各0.5ml，混匀，37℃温育1h，离心，取上清液于紫外分光光度计比色，以不加补 体的空白管调零，结果见表2。
表2结果显示：CY模型组溶血素和溶血空斑形成OD值明显低于空白对照组。与其相比，高剂 量佛手多糖组可显著促进溶血素和溶血空斑形成。
表2 佛手多糖对CY所致免疫抑制小鼠溶血素、溶血空斑形成的影响
组 别 剂量
(mg/kg) 动物数
(只) 溶血素形成
(OD) 溶血空斑形成
( n=5，OD)
空白对照组 10 0.148±0.048** 0.608±0.02**
CY模型组 10 0.03±0.012 0.334±0.01
龟鹿补肾组 1g 10 0.089±0.012* 0.394±0.008*
高剂量组 400 10 0.083±0.019* 0.408±0.005 *
中剂量组 200 10 0.039±0.011 0.348±0.03
低剂量组 100 10 0.032±0.015 0.343±0.02
与模型组比较* P＜0.05，** P＜0.01
2.4 对CY所致免疫抑制小鼠外周血中T细胞百分比和淋巴细胞转化的影响［3］：给药前3d每鼠肌注PHA 10mg/kg，第8d取血推片，自然风干后，浸入预热30min的孵育液中孵育3h，水冲去沉渣，滤纸吸干水分，1%孔雀绿染 色，冲洗晾干，油镜计算T淋巴细胞百分比。小鼠取血涂片，瑞氏染色，油镜计算淋巴细胞 转化率，结果见表3。
表3结果显示，CY模型组外周T细胞百分比和淋巴细胞转化率均明显低于空白对照组。与其相比，3个剂量的佛手多糖和龟鹿补肾液均可明显提高免疫抑制小鼠外周T细胞百分比和淋巴细胞转化率。
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