好的生物相容性可降解的微囊用于体内、外标记,通过电镜、影像技术及免疫细胞化学分析,证明微囊中BrdU能有效掺入鼠脑疾患周围的增生细胞核中,可连续释放高浓度BrdU达48-50小时[12]。另有人研究渗透性微囊和缓弹丸,发现标记效果均优于单次注射。
研究非放射性标记物常与放射性标记物相比,以证明特异性,敏感性及其它有关特性,在同一靶细胞比较似乎更具有说服力。然而3H-T d R和BrdU的比标记研究不能在同一时间给药,因两种标记物在同一个细胞增殖周期内竞争胸腺嘧啶激酶。有人认为两种标记先后给药均可,另有主张先标BrdU,理由是3H-TdR放射自显影乳胶用胰酶去除时偶有细胞丢失,致其后BrdU标记信号损失,Lin等强调BrdU标记时间较3H-TdR长约50分钟,如先标记3H-TdR可望BrdU能标记更多早期S期细胞[3]。Thoolen从另外角度观察两种标记染色之间关系,将成年的雄鼠分3组,腹膜下分别注射3H-TdR,BrdU和两中标记物曲小时后取睾丸标记处理,免疫金银法染色,分别计数精原细胞每组平均阳性胞核数量,结果3H-TdR标记为162个,BrdU标记为166个,双标记为146个说明90% BrdU掺入的清原细胞显示3HTd R标记,另有10%胞核仅显示一种标记,无交叉性。3H-TdR的β射线散射范围有限,使放射自显影反应不可能超过远离乳胶1μm以上的胞核,这些胞核或许能被BrdU标记显色,少数细胞仅接受一种标记的确切原因不清楚,也可能与碱基配对所形成的氢键数量有关。此外已证明微波,氯化锂13]、氟尿嘧啶核苷等均有助于BrdU标记。
二、检测:
BrdU特异掺入S期细胞,通常测定其LI,即S期细胞占细胞周期的百分数,标记阳性为光镜下致密覆盖于胞核上的褐色沉淀物。检测方法用单抗或多抗的免疫化学法,也可用DNA荧光染料染色的细胞化学法。目前常用免疫金银法,因该法不受内源性过氧化酶影响,较免疫酶标法有更好对照背景。不同类型细胞DNA对变性敏感性的差别可能由染色质结构决定,某些类型对变性反应迟钝,使检测不敏感或失败,有人提倡单抗联接BrdU后用FCM检测较免疫组化法更客观省时,且可测出肿瘤倍体[14]。但需注意恶性瘤常伴组织及细胞坏死,BrdU不能掺入死亡细胞,故用FCM分析须除外死亡细胞,否则可被错误当成静止细胞。胰酶和Dnase混合孵育细胞标本有可能克服死亡细胞干扰
三、BrdU标记和3H-T d R标记的比较
与32P、35S等常用放射性核素相比,3H-TdR释放的β-粒子能量低,散射极少,因此感光乳胶上的成影分辨最高,放射性损伤相对较小,且半衰期较长。3H-TdR标记用放射自显影术和闪烁计数检测,灵敏度高,结果确切。其应用价值已经肯定。因此研究非放射性标记物多以3H-TdR为标准对照。在肿瘤生物学和细胞增殖动力学的研究中,Mayer在试管内分析一组人乳腺癌大样本,比较BrdU和3H-TdR的标记效果,3H-TdR标记234例,平均LI为6.9±0.4%;BrdU标记450例,平均LI6.4±0.3%,两种标记物无显著差异(P>0.05)。BrdU和3H-TdR标记的肿瘤大小,组织类型,淋巴结转移,胞核大小以及DNA倍体均正相关,充分说明两种标记物之间的密切关系。在同一靶细胞标记也证明90%以上标记3H-TdR阳性细胞也标记有BrdU,反之亦然。
四、应用:
BrdU标记用于DNA修复、复制、分子杂交的重组DNA技术可替代同位素标记,在分子生物学、遗传学、细胞增殖动力学,肿瘤生物学、免疫学、药理和药代动力等领域有广泛应用价值。Kitazaws等用BrdU标记对白血病细胞HL-60和K562基因表达进行研究,将标记DNA和RNA原位杂交,发现80%用于合成DNA的胸腺嘧啶被BrdU替代[15]。Stevenson等用BrdU单抗和FCM对哺乳动物细胞BALb/C,3T3,Colon26等6种细胞系研究杀瘤性巨噬细胞的细胞毒作用对细胞动力学的影响。受试细胞系接触Mφ之前,先经BrdU脉冲标记,即在适当时间加入B rdU,只作用短时间马上洗去,以保证BrdU掺入DNA的精确时间,结果发现在12小时的细胞培养中,6促细胞系的细胞均可被杀瘤性Mφ阻滞在细胞周期的每一个时相内[16]。
近几年来,由于BrdU标记方法敏感、简单和迅速,该技术在肿瘤增殖动力学领域的研究也非常活跃[17-20]。目前BrdU标记不仅用于肿瘤诊断,评估预后,对指导肿瘤治疗已受重视,将活检标本LI作为术后的是否行辅助治疗的依据,
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