1 材料与方法
1.1 研究对象 收集26例住院KD患者,均符合日本MCLS研究会诊断标准[3],随机分为两组,阿司匹林(ASP)治疗组和IVIG治疗组(IVIG+ASP)。IVIG组16例,男11例,女5例,年龄8.0个月~6.5岁(平均2.8±1.3岁),常规ASP治疗组10例,男6例,女4例,年龄6.5个月~5.5岁(平均2.5±1.2岁),两组患者开始治疗时病程长短、病情轻重均无明显差异。健康对照组20例,男12例,女8例,年龄1.0岁~6.2岁(平均2.6±1.2岁)。
1.2 治疗方法 患者住院时病程为5.0~7.0 d,入院时立即给予治疗。IVIG组于平均病程5.8 d,使用IVIG治疗(2 g/kg,长春生物制品研究所,批号91-13),同时联合应用ASP 50 mg/(kg。d),退热后减至10 mg/(kg。d)。ASP组于平均病程6.2 d开始给予ASP治疗,剂量同前。
1.3 细胞分离及培养 两组患儿均在用药前和用药后3.0~5.0 d取肝素抗凝血,常规分离PBMC,调细胞浓度至1×106 ml-1,置24孔培养板,加anti-CD3(终浓度100 μg/ml),部分加抗IL-6单抗(第四军医大学免疫学教研室,终浓度1∶1 000),于37℃,5% CO2孵箱分别培养0、12、24、48、72 h。
1.4 凋亡细胞形态学观察 按照文献[4]方法,在荧光显微镜下观察,细胞体积缩小,核固缩,染色质凝固,沿核膜呈点状、新月形、杆状等定为凋亡细胞,计算200个细胞及凋亡细胞百分率。
1.5 DNA梯度观察 根据文献[5]方法略加改良,1×106 ml-1培养细胞中加入低渗性缓冲液(10 mmol/L Tris,1 mmol/l EDTA,0.2% TritonX-100,SIGMA公司)0.5 ml溶解细胞,离心取上清,用饱和酚(pH>7.8)及氯仿、异戊醇(24∶1)抽提,加无水乙醇,-20℃过夜。70%乙醇洗涤后,RNaseA(20 μg/ml,北京华美公司)去除RNA,1%琼脂糖凝胶电泳,紫外灯透照下观察片段DNA梯度,并照相记录。
1.6 IL-6的测定 无菌收集各种条件下PBMC经PHA(终浓度为20 μg/ml)刺激48 h后培养上清,采用双抗体夹心ELISA法检测。IL-6试剂盒为第四军医大学免疫学教研室产品。
2 结果
2.1 凋亡细胞百分率 正常对照组PBMC体外培养不同时间后可见细胞核固缩,呈新月形、杆状等凋亡典型的形态学改变,KD患者出现细胞形态学改变明显延迟。其中培养24、48 h后,KD患者PBMC凋亡百分率与正常对照组相比,结果见表1。
经IVIG治疗后,KD患者PBMC体外培养凋亡细胞百分率明显提高,治疗前后差异显著;ASP组治疗前后无差别 ,两组治疗后比较有显著差异,见表2。
表1 KD与正常儿童PBMC的APO发生率比较(±s,%)
Tab.1 Percentage of apoptotic cell of PBMC from KD patients and normal subjects(±s,%)
Groups n 0 h 24 h 48 h 72 h
Normal 20 2.01±1.21 21.48±3.41 31.48±4.46 40.74±5.87
KD 30 2.26±1.071) 10.89±3.612) 18.67±5.68 33.15±8.45
Note:compared with normal 1)P>0.05,2)P<0.001
表2 治疗前后KD患儿PBMC的APO发生率比较(±s,%)
Tab.2 Percentage of apoptotic cell of PBMC from KD patients before and after different treatment(±s,%)
Groups 0 h 24 h 48 h 72 h
Before After Before After Before After Before After
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