倍数为26，腹水样品为212。
1.2.2 检测方法 本实验采用军事医学科学院基础医学研究所建立的IL-6生物活性MTT［3-（4.5-dimethtchiazo／z-yl)-2.5-diphenyltetrazo／iambromide］比色测定法［3］。测定采用7TD1细胞株，此细胞需IL-6存在的情况下才能生长和增殖，且增殖程度与IL-6的浓度在一定范围内密切相关。常规条件下培养1 w，一般传12代，RPMI1640培养液洗涤细胞3次，离心2 000 r／min 10 min，RPMI1640调细胞浓度为1.2×105 ml-1。置96孔培养板上进行细胞培养，每孔分别加各种稀释浓度的样品50 μl及调好细胞数的7TD1细胞50 μl，常规条件培养48 h，加入MTT液20 μl，再培养48 h，而后加入10%SDS 100 μl/孔，37℃放置过夜，在酶联测定仪上测定A-600值，以空白对照管调零点。
1.3 统计方法 IL-6活性计算采用能引起50%最大生长刺激样孔,测定值定为IL-6浓度为1 U／ml推算所测定样品IL-6值。测定结果经t检验进行显著性分析。
2 结果
2.1 卵巢癌患者腹水中IL-6水平为1 942.26±376.51 U／ml，血清中IL-6水平为20.95±4.06 U／ml，两组比较差异显著(P＜0.0001)。
2.2 卵巢癌患者腹水、血清中IL-6水平随分期的增加而升高，与卵巢癌分期呈正相关。Ⅰ～Ⅱ期与Ⅲ期、Ⅰ～Ⅱ期与Ⅳ期、Ⅲ期与Ⅳ期间腹水中IL-6水平相比较差异显著(P＜0.005)，结果见表1。
表1 卵巢癌患者不同病程腹水、血清中IL-6水平比较(±s，U/ml)
Tab．1 Comparison of IL-6 levels of ascites & serum in the stages of ovarian carcinoma patients(±s，U/ml)
Stage n Levels of IL-6 in ascites Levels of IL-6 in serum
Ⅰ～Ⅱ 16 1 064.27±375.311） 11.97±4.972）
Ⅲ 14 1 894.41±342.411） 23.95±3.872）
Ⅳ 10 2 868.05±392.251） 33.22±3.202）
Note：1)Compared among the three groups，P＜0.005；2)Compared among the three groups，P＜0.005
2.3 卵巢癌患者术后IL-6水平与肿瘤残留大小呈正相关，无残留与残留＜2 cm、无残留与残留＞2 cm、残留＜2 cm与残留＞2 cm等中的腹水、血清中IL-6水平相比较差异显著(P＜0.05)，见表2。
表2 卵巢癌患者肿瘤术后残留与腹水、血清IL-6水平的变化(±s，U/ml)
Tab．2 Comparison of IL-6 levels of ascites & serum in the residues of ovarian carcinoma after the operations (±s，U/ml)
Residue(cm) n Levels of IL-6 in ascites Levels of IL-6 in serum
0 14 275.46±199.421） 10.48±4.752）
＜2 7 1 533.09±478.401） 20.70±4.082）
＞2 19 2 667.83±452.501） 31.69±3.752）
Note：1)Compared among the three groups，P＜0.005；2)Compared among the three groups，P＜0.005
3 讨论
3.1 卵巢癌腹水、血清中IL-6测定的临床意义 卵巢癌是诊断晚、转移早的肿瘤，临床上卵巢癌患者多发生盆腔转移，且出现腹水者多，大量腹水造成患者低蛋白血症，抵
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