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大鼠胚胎小脑提取液对培养脊髓神经细胞的作用 |
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)作相应稀释,得到不同蛋白浓度(0.05~0.60mg/ml)的CE。 1.2 细胞培养 取出E18脊髓,经胰酶消化得到脊髓细胞悬液,稀释到1×106/ml。将细胞悬液以5×104/孔的密度接种于96孔板。实验组每孔加入50 μl不同胎龄不同浓度的CE,对照组每孔加入50μl PBS (pH7.0),每孔总容量为100μl。置培养箱内孵育24h。各组每次8孔,重复2~3批次。 1.3 快速微量自动比色(MTT)分析 终止培养前4h,96孔板每孔加10μl四唑盐衍生物MTT溶液(1.5mg/ml 1640),继续培养4h后每孔加入100μl 0.08mol/L HCl—异丙醇溶液终止反应。用吸管反复抽吸使蓝色产物充分溶解,将培养板置于微板读数器内,采用实验波长570nm,参考波长630nm测定每孔样品的光密度(OD)值。四唑盐衍生物MTT可被活跃的细胞摄取,并在细胞质线粒体脱氢酶的作用下转变为蓝色产物formazan,在一定波长下比色得到OD值。活跃细胞越多,蓝色产物越多,则OD值越高,说明作用性越强。 1.4 统计分析 对所得数据进行Student s t检验,α=0.05。 2 结果 终止培养后测得各孔OD值,反映各胎龄不同浓度CE对培养24h E18脊髓神经细胞的作用,见表1、2,图1、2。
表1 E14及E16 CE对培养24h E18脊髓神经细胞的作用(n=8,±s)
OD值 对照组 实验组CE蛋白浓度(mg/ml) 0.05 0.10 0.15 0.20 0.25 E14 OD值 0.002 ±0.001 0.038 ±0.009 0.120 ±0.020 0.132 ±0.014 0.174 ±0.019 0.155 ±0.012 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 E16 OD值 0.004 ±0.002 0.047 ±0.005 0.072 ±0.017 0.099 ±0.023 0.146 ±0.020 0.213 ±0.015 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001
图1 E14及E16 CE对培养E18脊髓神经细胞的作用
表2 E18及E20 CE对培养24 h E18脊髓神经细胞的作用(n=8,±s)
OD值 对照组 实验组CE蛋白浓度(mg/ml) 0.40 0.45 0.50 0.55 0.60 E18 OD值 0.010 ±0.001 0.141 ±0.025 0.056 ±0.004 0.041 ±0.005 0.031 ±0.002 0.020 ±0.001 P <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 <0.001 E20 OD值 0.006 ±0.001 0.014 ±0.001 0.010 ±0.002 0.016 ±0.002 0.008 ±0.001 0.010 ±0.004 P <0.001 <0.001 <0.001 >0.05 <0.02
表1和图1显示了0.05~0.25mg/ml蛋白浓度的E14与E16 CE对培养脊髓神经细胞的作用。可见各实验组与对照组有极显著性差异(P<0.001),E14组最适浓度为0.20mg/ml。 表2和图2显示了0.40~0.45mg/ml蛋白浓度的E18与E20 CE上一页 [1] [2] [3] 下一页 上一个医学论文: 反义周期蛋白B1基因抑制HT29细胞的增殖 下一个医学论文: 实验性消化道溃疡肠上皮内淋巴细胞体外转化能力与IFN 分泌活性的变化
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