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温石棉改性前后对人胚肺细胞癌基因改变的比较 |
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片机(刻度调至5 μm处)切割后,置60 ℃ 烤箱中烘干备用。临用前将石棉加入双蒸水中,超声10分钟,并用混悬器振荡2分钟,配成浓度均匀的混悬液。 3. 石棉纤维的预处理:将一定量的温石棉悬液与相同浓度的混合稀土、柠檬酸铝或亚硒酸钠溶液相混后,分别在室温下作用1小时,2 000 r/min离心10分钟,弃去上清液后,再用PBS将下部沉淀配成浓度均匀的混悬液。 二、细胞染毒 将细胞接种于25 ml培养瓶中(1×105/ml),培养24小时后,用石棉或浸泡过的石棉悬液染毒24小时,弃培养液,用D-hank液洗3遍,传代后培养24时,重复染毒24小时,去毒后传代。培养24小时后,再次染毒24小时,弃培养液,用D-hank洗3遍,加入新鲜的MEM(含10%的小牛血清)继续培养。此后,3天传代1次,传至第10代时,将细胞转移至大瓶中培养,测定P21ras蛋白的含量。同时提取细胞总RNA,用Dot Blotting分析c-Ha-ras癌基因的转录活性。 三、P21ras蛋白含量测定(流式细胞术) 将上述转至大瓶中培养的细胞消化后,用含5%小牛血清的PBS洗2遍,按照文献[2]所述方法测定P21ras蛋白含量。Ⅰ抗为美国Santa Cruz公司生产的P21ras,FITC标记的Ⅱ抗为美国Jackson公司生产的羊抗小鼠IgG。 四、c-Ha-ras癌基因转录活性的测定[3,4] 1. 细胞总RNA的提取及比色鉴定:细胞用冰冷的PBS洗2~3遍,加入0.5 ml冰冷的变性液将其消化裂解,加入2 mol/L醋酸钠0.05 ml(pH值4.0)、酚、氯仿-异戊醇(49∶1)0.5 ml,振荡混匀,冰浴20分钟,4 ℃10 000 r/min 离心20分钟,转移上相至新管中,同上重复抽提1次,取上层水相与等体积异丙醇混合,-20 ℃ 1小时,4℃12 000 r/min 15分钟,弃液相,沉淀溶于600 μl变性液中,加等体积异丙醇再次沉淀,4 ℃ 12 000 r/min 离心15分钟,沉淀用75%乙醇洗涤,真空干燥,溶于DEPC处理的去离子水中,紫外分光光度计比色定量后分装,-70 ℃保存备用。 2.探针标记:随机引物法标记双链DNA探针(GIBCO公司,RADPRIME LABELING SYSTEM)。取25 ng双链DNA纯化片段,变性后置冰浴中,加入相应的缓冲液和dNTPS, 3~5 μg 32P核素标记的核苷酸,加入1 μl Klenom酶,轻柔混匀,37 ℃温浴20~40分钟,标记之后变性、冰浴,测定比活性后使用。 3.细胞总RNA的电泳鉴定:取20 μg已定量的RNA,体积定为5 μl,加入10×MOPS 1 μl、甲醛3.5 μl、去离子甲酰胺10 μl,68℃温浴15分钟,使样品变性,加入2 μl甲醛凝胶加样缓冲液,水浴,同时用1×MOPS配制1%的凝胶,微波炉溶胶,冷却至60℃,加入甲醛使终浓度为2.2 mol/L,铺胶,上样,在1×MOPS缓冲液中20~40 V电泳6~12小时,当溴酚兰走至凝胶全长3/4时停止电泳,用0.5 μg/ml EB染色,长波紫外灯下拍照记录。 4.Dot blotting分析: 将5 μg和7 μg RNA直接点到Bio-Rad尼龙膜上,80℃真空烘烤2小时,固定RNA(同时将RNA点到尼龙膜上,用β-actin杂交作为对照)。将尼龙膜装入塑料杂交袋,加入预杂交液, 65℃预杂交5分钟,倒尽预杂交液,按150 μl/cm2膜加入杂交液,65℃杂交24小时,弃尽杂交液后,用洗膜液洗膜,以微型同位素检测器检查膜上放射线强度,在10 cpm时终止洗膜。将湿润的尼龙膜封入保鲜膜中,同富士X线胶片一起夹于配有增感屏的X线暗盒内,-70℃条件下曝光,时间为1~2周,胶片经显影、定影后,观察结果。
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