induced apoptosis in human neuroblastoma cells.Overexpression of TF might contribute to chemotherapy resistance in neuroblastoma and its progression,at lest in part,by regulating doxorubicininduced apoptosis.Key words: Tissue factor; Neuroblastoma; Apoptosis; Chemotherapy
组织因子(tissue factor,TF)是外源性凝血途径的启动因子,内皮细胞和单核细胞TF表达及活性的增强与血栓栓塞性疾病密切相关。然而,TF在多种肿瘤如乳腺癌、胰腺癌、结肠癌、神经母细胞瘤等表达异常增高,其表达水平与肿瘤分化程度等病理特征相关,与预后呈负相关[1,2]。近年来研究发现TF具有信号转导受体的功能,可通过诱导多种信号转导增强肿瘤的生长、侵袭及转移[3]。TF影响肿瘤发生发展的机制目前并未完全阐明。TF是否参与化疗药物诱导的肿瘤细胞凋亡,影响肿瘤细胞对化疗药物的敏感性尚无报道。本文通过基因转染研究了TF在人神经母细胞瘤中的高表达对阿霉素诱导肿瘤凋亡的影响。
1 材料与方法
1.1 细胞系与试剂 人神经母细胞瘤细胞系SKNSH及SHEP1由美国Muxiang Zhou教授惠赠(Emory University,Atlanta,USA),在含10%胎牛血清、2 mMLglutamine,50 u/ml青霉素及50 μg/ml链霉素的RPMI 1640中,37℃、5%CO2环境下培养。鼠抗人TF单抗(TF910H10)购自Calbiochem(San Diego,CA),鼠抗人caspase3及βactin单抗购自Santa Cruz Biotechnology(Santa Cruz,CA),鼠抗人PARP单抗购自BD Biosciences(San Jose,CA)。
1.2 质粒及基因转染 采用作者既往构建的含有TF全长cDNA的真核表达载体TFpcDNA 3[4]。SKNSH细胞以1×106/孔密度接种于6孔培养板,24 h后以Lipofectamine 2000TM(Invitrogen,CA,USA)介质进行瞬间转染,每孔转入质粒2 μg;以空载体pcDNA 3作为对照,48 h后收获细胞用于检测蛋白表达或阿霉素诱导凋亡相关实验。
1.3 Western印迹法 收集细胞后,以细胞裂解液处理,离心后取上清,以考马斯亮蓝法(Protein assay,BioRad,美国)进行蛋白质定量。蛋白变性后,以含有10 μg总质白的样本进行10%SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,之后将凝胶上的蛋白质电转移到硝酸纤维素膜上,封闭液封闭后,分别以特异性TF、Caspase3、PARP或βactin单抗孵育,4℃过夜,继而与辣根过氧化物酶标记的二抗室温孵育1 h,以增强化学发光法(ECL,Amersham Life Science,英国)显色。以βactin作为蛋白质完整性及等量的对照。
1.4 细胞毒性试验(WST法) 阿霉素对人神经母细胞瘤细胞系的细胞毒性以WST(watersoluble tetrazolium salt)法检测,原理与MTT法相同,以水溶性四唑盐WST1(Roche,德国)替代MTT,WST1被具有代谢活性的细胞中的线粒体相关脱氢酶裂解,产生的有色产物可直接在分光光度计上检测,其浓度与细胞活性成正比,而不需加入二甲亚砜溶解MTT法产生的难溶性的蓝色结晶物,因此操作更简便,结果更稳定[5]。将胶质瘤细胞以5×104/孔密度接种于96孔培养板,与不同浓度的阿霉素孵育44 h,之后每孔加入WST1试剂25 μg,37℃继续孵育4 h后,450 nm波长测定光密度(optical density,OD),参考波长为620 nm。
1.5 细胞凋亡检测 经过处理的细胞以10 μM Hoechst 33342(invitrogen,CA)于37℃染色1 h,而后在倒置荧光显微镜(Olympus IX50)下观察。由不了解本研究的观察者计数凋亡细胞数,共完成3次独立实验,每个实验中每次处理条件下从3个培养孔中随机选择视野(200×)计数。
1.6 统计学处理 上述实验中每种处理均重复进行3次,部分结果以均数±标准差表示。选用t检验法进行统计学处理,以P<0.05作为有统计学显著性差异
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