hR功能的丧失, 而不涉及肌肉蛋白,特别是与收缩有关的蛋白的变化呢?本研究就此问题进行探讨。 资料和方法
1. 样品来源:正常人肌肉标本10份,取于10例骨折手术病人的肢体骨骼肌。MG患者肌肉标本17份,取于17例全身型MG患者,无呼吸肌受累,其中8例伴胸腺瘤,9例伴胸腺增生。肌肉取自MG患者胸腺切除手术切口周围的骨骼肌,标本均于-27℃保存。
2. 蛋白的提取及浓度的测定:蛋白按常量及微量两种方法进行提取。常量提取:肌肉样品取米粒大小置微量玻璃匀浆器,加入100 μl肌球蛋白提取液Gubstraub溶液(0.3 mol/L KCl,0.10 mol/L KH2PO4,0.05 mol/L K2HPO4,pH 6.5),冰浴下制成匀浆,吸出肌肉匀浆,加50 μl提取液洗涤,合并匀浆液并放置4℃过夜,10 000×g离心15 min,上清液再经25 000×g离心10 min,按Spector[5]方法测定蛋白浓度。微量提取:将低温贮存的肌肉标本移至4℃冰箱,放置片刻使其软化,取一小块肌肉置解剖镜下滴加含20%甘油的生理盐水,剥取肌纤维10根左右,放置0.5 ml Ep管底部,加入10 μl Gubstraub溶液,4℃过夜,离心后吸取上清液,蛋白定量后冷冻保存。
3. 肌球蛋白的部分纯化:基本按Konagaya等[6]方法进行。简言之,取正常人与MG患者肌肉各1块(约10 mm3),按上述常量提取法获得蛋白上清液, 该上清液以14倍体积的预冷无离子水稀释,混匀后10 000×g离心 10 min,沉淀用100 μl Gubstraub溶液溶解,再以9倍体积的预冷无离子水稀释,混匀后10 000×g离心10 min,沉淀用50 μl Gubstraub 溶液溶解。
4. 蛋白的单相电泳分析:基本按Laemmli[7] 方法进行非连续聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)分析。制胶及电泳缓冲液均为含 0.1%SDS的Tris/Gly, pH 8.3。常量电泳分析蛋白加样量均为30 μg,凝胶用考马斯亮蓝染色。微量电泳分析加样量均为1 μg, 蛋白检测基本按Kirkeby等[8]方法进行银染。
5. 蛋白双向电泳分析:基本按任惠民等[9]方法进行。第1向等电聚焦的胶长约40 mm,直径0.7 mm,凝胶浓度为5%(含4% pH 3.5~10.0的ampholyte, 5%甘油和1%尿素)。蛋白加样量为30 μg,凝胶上蛋白用银染显色。
6. 蛋白分析及统计方法:将所需比较的蛋白谱带经生物电泳图像分析仪扫描并计算密度。检测结果以±s表示,两组间比较采用t检验。
结果
1. 肌肉蛋白的微量和常量分析电泳图谱:图1左侧为常量提取的肌肉蛋白电泳图谱,图1右侧为微量提取的肌纤维蛋白经电泳分离的银染图谱。2种方法分析的结果均显示,相对分子质量约25 000蛋白谱带浓度在正常肌肉中明显高于MG肌肉。
2. 正常人肌肉与MG患者肌肉25 000蛋白水平的比较:常量电泳分析,25 000蛋白谱带经扫描计算,密度在正常肌肉中为4.14±1.33, MG肌肉中
为2.02±1.08, 差异有非常显著意义(P<0.001)。微量电泳分析,25 000蛋白谱带密度在正常肌肉中为4.26±2.58, MG肌肉中为1.32±0.79,差异亦有非常显著意义(P<0.001)。 3. 蛋白的双向电泳图谱:图2A为正常人及MG患者肌肉蛋白的双向电泳图谱。从图2A可看出单相SDS-PAGE图谱所显示的25 000谱带至少由2个蛋白成分组成,正常肌肉与MG肌肉中有明显差异的是1个偏碱的蛋白成分。图2B为提取的肌肉蛋白与部分纯化的肌球蛋白提取物双向电泳图谱。可以看出,有差异的25 000蛋白与肌球蛋白提取物获得的蛋白成分无关。
讨论
人们很早就对MG患者肌肉的形态学特征及与肌肉收缩有关的重要化学物质,如肌球蛋白、肌动蛋白等进行了研究。虽然发现MG患者血清中抗肌球蛋白、肌动蛋白、肌钙蛋白等抗体滴度高于健康人[10], 但迄今仍没有充分的证据说明MG患者肌细胞中调控肌纤维收缩的粗丝、细丝和Z带等形态学特征以及与肌肉收缩有关的蛋白合成发生了明显的改变,即使是在MG患者胸腺组织,也未发现肌样细胞(myoid cells)的数目和结构以及对肌球蛋白、肌钙蛋白等抗体的染色反应与正常人有明显的差别[11]。因此,目前对MG的研究主要集中在对AChR的结构、抗体与抗原免疫学特征、应答AChR功能丧失的免疫学机制等方面。那么,MG患者肌细胞内的化学物质,特别是DNA与
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