、力学性能以及可靠的生物安全性，同时它又是良好的生长因子缓释载体[7] 。本实验采用物理方法制备PLGA膜，并根据需要表面吸附多种生长因子，电镜下观察到膜表面呈珊瑚状粗糙面，有利于骨细胞整合及稳定血凝块[8] ，而表面吸附的生长因子在骨形成早期能够及时释放。膜的另一侧呈光滑面，朝向软组织阻挡结缔组织长入。这种膜结构可使多种生长因子只向膜管内的骨缺损区一侧释放，既提高膜管内生长因子的浓度，又减少了外 源性生长因子的用量。
免疫组化结果表明，PLGA/bBMP+IGF-Ⅱ+bFGF组在2、4、8周时bBMP均显示阳性，而IGF-Ⅱ和bFGF在2周时显示弱阳性，但4周和8周时显示阴性，说明本实验制备的骨诱导再生膜在2周内对多种生长因子有良好的释放效应。8周时仍有bBMP表达，这可能与膜表面吸附其剂量较多有关，说明生长因子的缓释时间与其吸附量呈正相关。
参考文献:
[1]Pinheiro ML，Moreira TC，Feres-Filho EJ.Guided bone regeneration of a pronounced gingivo-alveolar cleft due to orthodontic space closure[J].J Periodon-tol，2006，77:1091-1095.
[2]Iwata H，Sakano S，Itoh T，et al.Demineralized bone matrix and native bone morphogenetic protein in or-thopaedic surgery[J].Clin Orthop，2002，(395):99-109.
[3]Hill PA，Tumber A，Meikle MC.Multiple extracellu-lar signals promote osteoblast survival and apoptosis [J].Endocrinology，1997，138:3849-3851.
[4]Meinig RP.Polylactide membranes in the treatment of segmental diaphyseal defects:Animal model exper-iments in the rabbit radius，sheep tibia，yucatan min-ping radius，and goat tibia[J].Injury，2002，33:58-65.
[5]Duan H，Fan Y，Chen J，et al.Experimental studies on exterior bFGF for enhancement of membrane guided bone regeneration[J].Sheng Wu Yi Xue Gong Cheng Xue Za Zhi，2004，21:879-883.
[6]姜文学，曹现林，徐东明，等.诱导性人工骨膜复合异体骨移植修复兔桡骨缺损[J].中华骨科杂志，2006，26:336.
[7]Hu Y，Zhang C，Zhang S，et al.Development of a porous poly(L-lactic acid)/hydroxyapatite/collagen scaffold as a BMP delivery system and its use in healing canine segmental bone defect[J].J Biomed Mater Res A，2003，67:591-598.
[8]Hureler MB，Kohal RT，Naynshandi J，et al.Evalua-tion of a bew bioresorbable barrier to facilitate guid-ed bone regeneration around exposed implant threads [J].Int J Oral Maxillofac Surg，1998，27:315-320.
[9]陈庆.成纤维细胞生长因子在骨修复中的作用和应用[J].中国组织化学与细胞代学杂志，2001，10:337-339.
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